Кукурузный экстракт — компонент для улучшения питательной ценности среды. Он представляет собой побочный продукт, вырабатываемый при производстве кукурузного крахмала путем выпаривания воды, в которой кукурузное зерно замачивалось перед дроблением. При замочке кукурузы в теплой воде, содержащей сернистую кислоту, в раствор переходит около 7—8% сухих веществ зерна. Кукурузный экстракт получил широкое применение в медицинской промышленности при производстве пенициллина и других препаратов (БСЭ, т. 24).
В практике работы с различными микроорганизмами отмечается стимулирующее действие малых доз кукурузного экстракта при прибавлении его в обычные питательные среды. В большой степени ценность кукурузного экстракта зависит от содержания в нем набора аминокислот. С помощью автоматического аминокислотного анализатора Т. П. Ефимова обнаружила в составе кукурузного экстракта 16 аминокислот. Количество связанных аминокислот составляло 362 мг на 1 г сухого вещества, а свободных— 101,8 мг. Содержание сухого вещества в кукурузном экстракте 48,7%, а общего количества азота — 7,96 мг%. Установлено, что разные партии кукурузного экстракта различаются по своему качеству (А. Н. Климов, Т. П. Ефимова, 1965).
Для выделения микроорганизмов с растений делают поверхностный посев из смывов с корней, листьев и пр. Смыв как исходный материал для посева получают путем энергичного встряхивания в стерильной воде навески растительного материала (1—5 г в 100 мл воды). Предварительно можно исследуемый образец слегка растереть в ступке в небольшом количестве воды для лучшей смываемости бактерий. Чтобы получить на чашках не слишком густой рост колоний и не допустить их сливания между собой, необходимо сделать разведение посевного материала. Если исходный смыв в колбочке принять за разведение 1 : 100, то при анализе надземных частей растений его следует довести до 1 : 1 тыс., а для корней — до 1 : 10 тыс.
Посев производят следующим образом: 0,05 мл, или 1 каплю, посевного материала переносят пипеткой на поверхность агаровой питательной среды, налитой в чашки Петри. Эту каплю тщательно растирают шпателем Дригальского, а затем этим же шпателем производят посев, т. е. растирание по поверхности агара, последовательно еще на 2 чашки.
При выделении культур с растения лучше пользоваться питательной средой № 19, так как на фасолевой среде бактерии образуют слишком много слизи. Агар следует наливать в чашки не очень горячим, чтобы избежать намокания его поверхности конденсационной водой, образующейся из пара, при застывании агара. При большом количестве влаги вырастающие колонии могут расплываться или сливаться; такие чашки необходимо выбраковывать. Чашки выдерживают в термостате при 24—26° 3—6 суток. Последние 2 дня их оставляют на столе при дневном освещении для лучшей пигментации колоний.
Подробное и точное описание внешнего вида колоний при идентификации культур имеет большое значение как весьма характерный признак для каждого вида микроорганизмов. Желательно колонии зарисовать и показать цветными карандашами их окраску. Это в дальнейшем облегчает работу по определению вида.