Взаимоотношения между микроорганизмами изучались методом наложения блоков. Результаты учитывались по наличию или отсутствию зон роста Erw. carotovora вокруг агаровых блоков 10-суточных культур эпифитов, выращенных на капустной среде.
Из 87 изученных культур 11 проявили антагонистическое действие к Erw. carotovora (табл. 43).

Таблица 43
Результаты, приведенные в табл. 43, показывают, что из многих проверенных на антагонизм к Erw. carotovora культур наибольшей активностью обладали штаммы, принадлежащие к виду Ps. herbicola.
Таким образом, факты показывают, что многие эпи-фитные микроорганизмы обладают антагонистическими свойствами по отношению к ряду фитопатогенных бактерий и грибов. Массовое внесение таких антагонистов на растения или на прорастающие семена может привести к вытеснению патогенных видов с растений и оздоровлению последних.
Использование полезных свойств эпифитных микроорганизмов для повышения продуктивности растений не может быть достаточно успешным без конкретных знаний о составе этой микрофлоры, о ее свойствах и выделяемых продуктах жизнедеятельности.
Для того чтобы отобрать микроорганизмы, обладающие полезными свойствами, необходимо выделить и изучить большое количество культур. Только обширная коллекция дает возможность проводить сравнительное изучение культур. Это имеет значение и потому, что виды у микроорганизмов полиморфны и состоят из ряда соподчиненных таксономических единиц.
Изучение культур должно включать следующие этапы: 1) определение культуральных и морфологических признаков; 2) установление биохимических свойств; 3) выяснение влияния продуктов жизнедеятельности данного вида на растение.
Для установления широты распространения разных видов микроорганизмов на растениях необходимо при учете результатов анализа образцов (корней, листьев, семян) производить дифференцированный подсчет колоний на чашках и учитывать их соотношение
(см. табл. 44).
ВЫДЕЛЕНИЕ МИКРООРГАНИЗМОВ С РАСТЕНИЙ
Состав питательной среды играет решающую роль для обнаружения всего разнообразия микроорганизмов при их выделении из субстратов или с живых растений. Проявление характерных культуральных особенностей микроорганизма — строение и окраска колоний, образование слизи и другие — также зависит от состава питательной среды.
Для выявления эпифитов и культивирования их в пробирках в коллекции живых культур можно рекомендовать 2 питательные среды, приготовленные из растительных отваров.
1. Капустная среда № 19. Готовят среду на капустном отваре, для получения которого берут свежую капусту (100 г на I л воды), нарезают ее не очень мелко, заливают водопроводной водой и кипятят в течение 30 минут. Затем отвар фильтруют через бумажный фильтр или через чистую гигроскопическую вату, после чего вновь доливают кипяченую воду до первоначального объема. К капустному отвару добавляют 2,5% пивного сусла (крепостью 8—10 баллингов) и 0,125% кукурузного экстракта. После этого среду подщелачивают до рН 7,0—7,2 и добавляют к ней 1,5—2,0% агара. Стерилизуют в автоклаве 20—30 минут при давлении 0,5 атм. Повторная стерилизация среды не допускается. Состав среды № 19: капустный отвар — 1 л, сусло пивное— 25 мл, кукурузный экстракт — 1,25 мл, агар — 20 г.
2. Ф а с о л е в а я с р е д а № 23. Готовят среду на фасолевом отваре. Для получения отвара берут белую фасоль — 50 г на 1 л водопроводной воды — и кипятят 30 минут. Отвар отфильтровывают через вату или бумажный фильтр и доводят до исходного объема кипяченой водой. После этого в отвар добавляют 0,25% пептона, 1% сахара, 0,1% фосфорнокислого аммония, 0,125% кукурузного экстракта и 1,5—2,0% агара. рН среды устанавливают 7,0—7,2. Среду стерилизуют в автоклаве 20 минут при давлении 1 атм. Состав среды № 23: фасолевый отвар — 1 л, пептон — 2,5 г, сахар — 5 г, (NH4)2HP04—1 г, кукурузный экстракт—1,25 мл, агар — 20 г.